非洲猪瘟是由非洲猪瘟病毒引起的急性、接触性传染病。近几年随着非洲猪瘟病毒本身的不断变化，临床症状也变得较为复杂，使得猪场在非洲猪瘟诊断方面存在很多不确定性，为了更好的了解非洲猪瘟田间复杂性，笔者将相关内容汇总如下：

      一、非瘟的最新流行情况

      1.1 田间毒株的多样性

      非洲猪瘟病毒目前发现的基因型至少有24种，在我国，非洲猪瘟于2018年8月3日传入，毒株是以高毒力的Georgia-07型非洲猪瘟Ⅱ型病毒为主。2019年出现单基因缺失、双基因缺失弱毒株。但在2020年，我国部分省区出现了低致死率的非洲猪瘟基因Ⅱ型自然变异流行株^[1]，该毒株主要引起猪只的慢性感染，具有很强的水平传播能力。2021年，在河南省和山东省的猪场中分离到基因Ⅰ型非洲猪瘟病毒低毒力毒株，通过全基因组序列分析表明和葡萄牙分离的基因Ⅰ型高度同源^[2]，2023年，在我国猪群中检测到基因型Ⅰ和因型Ⅱ重组的高致死性非洲猪瘟病毒^[3]。由此可见，非洲猪瘟毒株在不断的发生变化，当前我国非洲猪瘟病毒呈现多毒株流行的状态。

      1.2 田间临床特征的多样性   

      非洲猪瘟病毒不断变异重组，导致了非洲猪瘟毒株临床特征多样性，详见下表：

      1.3 传播途径认知的提升

      在传播途径方面，非洲猪瘟主要通过接触传播，并且早期研究资料显示非洲猪瘟病毒通过气溶胶传播的距离较短，主要局限在近距离（2~3m）。但在2023年最新研究通过模型实验证实，ASFV气溶胶的传播距离至少为10米^[4]。这给猪场非瘟防控带来了更大的挑战，尤其是对于一点式饲养的猪场。

      二、非瘟的诊断

      对于规模化猪场而言，荧光定量PCR检测应用较为广泛，鉴于当前非洲猪瘟田间多样性的变化，猪场在对非洲猪瘟进行临床诊断时，要注意以下几点：

      （1）ASFV弱毒感染后，间歇性排毒的特征变得尤为明显，因此对于弱毒感染的猪场，首次采样最好“咽拭子+血液”双来源，同时一个潜伏期内检测两次，并且要保证配对检测。

      （2）在非洲猪瘟检测试剂盒选择方面，不要只以阴阳性的临界CT值作为判断试剂盒优良的依据，也要结合“S”曲线的“平台期”稳定性来判定，即试剂盒“有后劲”。

      （3）对于非洲猪瘟的临床确诊，猪场最好采用“核酸检测+抗体检测”双保险来综合判定，以排除在非洲猪瘟不同发病时间段对检测结果的影响。

      （4）在非洲猪瘟合样检测方面，当猪场在前期排查非瘟过程中发现阳性，且样本病毒含量很高（Ct值20左右）时，在后期紧急全面检测时，可以适当加大合样数量检测（稀释2048倍不影响结果）；当前期样本病毒含量较低（Ct值33左右）时，后期不建议大范围合样检测（不超过20个样品）。

      （5）当前弱毒居多，猪场一旦检测到猪只的相关样品呈非瘟阳性，往往意味着非瘟病毒已经在猪场内完成了由“点”向“面”的扩散，为时已晚，所以建议猪场应该把防非检测往“猪场外围”拓展，比如猪场周边的道路，车辙、装猪台等，便于早期发现，及时止损。

      参考文献：

      [1]Sun E , Zhang Z , Wang Z ,et al.Emergence and prevalence of naturally occurring lower virulent African swine fever viruses in domestic pigs in China in 2020[J].中国科学:生命科学英文版, 2021.

      [2]Sun E,Huang L,Zhang X ,et al.Genotype I African swine fever viruses emerged in domestic pigs in China and caused chronic infection[J].

      [3]Highly lethal genotype I and II recombinant African swine fever viruses detected in pigs[J].Nature Communications, 2023, 14(1).DOI:10.1038/s41467-023-38868-w.

      [4]Li X, Hu Z, Fan M,,et al. Evidence of aerosol transmission of African swine fever virus between two piggeries under field conditions: a case study. Front Vet Sci. 2023,10.